单倍型、候选基因关联分析
1.把单倍型文件处理成VCF文件
这里的单倍型信息形式可能非常多,要根据具体的数据类型来进行输入信息的处理vcf hapmap等皆可 主要还是要包含材料 位点 染色体 等需要结合分析的信息,这里随便选用一个基因与他的单倍型来进行测试。
import pandas as pd
import numpy as npdef create_vcf_input(genome_df, pheno_df):# 转置基因型数据并处理geno = genome_df.T# 创建VCF头部信息vcf_header = """##fileformat=VCFv4.2
##FORMAT=<ID=GT,Number=1,Type=String,Description="Genotype">
##contig=<ID=2>
##reference=B73_RefGen_v4
#CHROM\tPOS\tID\tREF\tALT\tQUAL\tFILTER\tINFO\tFORMAT\t{}""".format('\t'.join(pheno_df['Sample'].tolist()))# 处理每个SNP位点vcf_lines = []for idx, row in geno.iterrows():if 'REF' in idx: # 确保是SNP行# 解析位置和等位基因信息pos = idx.split('(')[0]ref_alt = idx.split('(REF:')[1].split('/ALT:')ref = ref_alt[0]alt = ref_alt[1].strip(')')# 创建VCF行genotypes = []for gt in row[1:]: # 跳过第一列(Unnamed: 0)if gt == ref:genotypes.append('0/0')elif gt == alt:genotypes.append('1/1')else:genotypes.append('./.')vcf_line = f"2\t{pos}\t.\t{ref}\t{alt}\t.\tPASS\t.\tGT\t{'\t'.join(genotypes)}"vcf_lines.append(vcf_line)# 合并所有内容vcf_content = vcf_header + '\n' + '\n'.join(vcf_lines)# 保存为文件with open('Zm00001d002439.vcf', 'w') as f:f.write(vcf_content)# 读取文件(使用你的原始路径)
f_g = pd.read_csv(r"Zm00001d002439_DI_SX\Zm00001d002439.genome.csv")
f_pht = pd.read_csv(r"Zm00001d002439_DI_SX\Zm00001d002439.Phe.csv")# 创建VCF文件
create_vcf_input(f_g, f_pht)
2.表型文件的准备
对应的也就是Tassel中的Phenotype文件
这里的格式要求非常诡异 试了好久
<Trait> trait1
773-2G 56.55270655
169 31.31313131
391 68.88888889
706 16.23931624
Fu746Mu 73.33333333
Ji63 23.14814815
.....
3.Tassel
接下来的操作就比较简单了:主要是gui版的Tassel
读入两个文件——>
vcf+phe——>
选中两个文件
——>直接用GLM分析就好了
——>
但是Tassel的图片太粗糙了,所以使用R代码自己绘图
在这个曼哈顿图中,90% quantile = 0.676 的含义是:
在这个曼哈顿图中,90% quantile = 0.676 的含义是:1. 统计学解释:
- 在所有的 -log10(p) 值中,90%的点都小于0.676
- 换句话说,只有10%的SNP位点的 -log10(p) 值高于0.6762. 生物学意义:
- 这个阈值可以帮助我们识别相对更显著的关联信号
- 高于这个阈值的位点(约10%的SNP)可能代表与性状有更强关联的候选区域
- 在您的数据中,有几个位点的显著性明显高于这个阈值,特别是接近 -log10(p) = 0.9 的那些位点3. 实际应用:
- 这不是严格的显著性阈值(像GWAS中常用的 p < 0.05 或更严格的阈值)
- 而是一个相对的参考线,帮助识别在这个候选区域中信号相对较强的位点
- 对于候选基因分析,这个阈值可以帮助我们关注信号较强的区域进行后续功能验证需要注意的是,因为这是候选基因分析而不是全基因组关联分析,这个阈值主要用于在已知的候选区域内进行信号的相对比较。
# 加载必要的包
library(ggplot2)# 读取数据
assoc_data <- read.table("Zm00001d002439_DI_SX.txt", header=TRUE, sep="\t")# 计算90%分位数阈值
threshold <- quantile(-log10(assoc_data$p), 0.9)# 找出最显著的SNPs(前三个)
top_snps <- assoc_data[order(-log10(assoc_data$p), decreasing=TRUE)[1:3], ]# 创建Manhattan图
p <- ggplot(assoc_data, aes(x=Pos, y=-log10(p))) +# 添加点geom_point(aes(color=-log10(p)), size=3, alpha=0.8) +# 使用从浅蓝到红色的渐变scale_color_gradientn(colors = c("#B8D7FF", "#FF9E9E", "#FF0000"),values = c(0, 0.5, 1),name = "-log10(p)") +# 添加90%分位数阈值线geom_hline(yintercept=threshold,linetype="dashed",color="red",alpha=0.5) +# 添加阈值标签annotate("text",x=min(assoc_data$Pos),y=threshold,label=paste0("90% quantile = ", round(threshold, 3)),hjust=-0.1,vjust=-0.5,color="red") +# 为最显著的SNPs添加位置标签geom_text(data=top_snps,aes(label=format(Pos, scientific=FALSE)),hjust=-0.1,vjust=0.5,size=3) +# 自定义主题theme_bw() +theme(panel.grid.major = element_blank(),panel.grid.minor = element_blank(),axis.text = element_text(size=12),axis.title = element_text(size=14),plot.title = element_text(hjust=0.5, size=16),plot.subtitle = element_text(hjust=0.5, size=12),legend.position = "right") +# 添加标签labs(x = "Position on Chromosome 2 (Mb)",y = "-log10(p-value)",title = "Local Association Analysis") +# 设置x轴刻度格式scale_x_continuous(labels = function(x) format(x/1e6, digits=3))# 保存图片
ggsave("manhattan_plot.svg", p, width=12, height=6, dpi=300)# 输出统计信息
cat("\n关键统计信息:\n")
cat("分析的SNP数量:", nrow(assoc_data), "\n")
cat("最显著的SNP:", top_snps$Marker[1], "\n")
cat("90%分位数阈值:", round(threshold, 3), "\n")# 输出最显著的SNPs
cat("\n最显著的3个SNP:\n")
print(data.frame(Marker = top_snps$Marker,Position = top_snps$Pos,P_value = signif(top_snps$p, 3),Negative_log10P = signif(-log10(top_snps$p), 3)
))